1、“.....拇指绷紧静脉的远端，无名指和小指放在耳郭下作垫。右手拿注射器，针尖的斜面朝上，将针头从远心端插入血管回抽有血即可注射，拔针后用棉球止血豚鼠可用足背静脉注射实验动物的给药二实验动物的采血尾尖采血眼眶静脉丛采血断头采血腹主动脉采血心脏采血腹主动脉采血静脉采血方法固定动物并露出鼠尾，将尾部在的温水中浸泡数分钟或以二甲苯棉球涂擦，使尾部血管扩张。将鼠尾擦干，用锐器切去尾尖，让血液滴入盛器或直接以血红蛋白吸管吸取。对象大小鼠特点小量采血，可以多次采血。尾尖采血方法用左手捉鼠，拇指及中指抓住头颈部皮肤，食指按于眼后，使眼球轻度突出，眼底球后静脉丛淤血。右手持取内径为的玻璃毛细管临用前折断成长的毛细管段，浸入肝素溶液中，干燥后用刺入深度小鼠，大鼠。当感到有阻力时再稍后退，得到所需要的血量后，拔出。对象大小鼠等。特点中等血量，小鼠，大白鼠，避免动物死亡......”。

2、“.....使其头略下倾，右手持剪刀猛力剪断鼠颈，让血液滴入盛器。对象大小鼠等。特点需要血量较大小白鼠可采血，大白鼠可采血，且不需要继续保存动物生命时用本法。断头采血方法动物要麻醉后进行，用针管在腹主动脉分叉处，与血管平行刺入。对象大小鼠等。特点需要血量较大，且不需要继续保存动物生命时用本法。腹主动脉采血方法将动物背位固定，在左胸第至第肋间剪毛块，用碘酒和酒精消毒。然后用配有号针头的注射器，在心跳最明显处作穿刺。针头刺入心脏后即见血液流入注射器或边刺边抽，直至血液流入注射器。取得所需血量后，迅速将针头拔出，这样心肌上的穿刺孔较易闭合。对象兔豚鼠等。特点采血量较大，继续保存动物生命。心脏采血方法将家兔放在固定箱内，剪去拟采血耳壳上的毛，用电灯照射加热或用二甲苯棉球涂擦耳壳，使耳部血管扩张。用粗针头刺破耳缘静脉或以刀片在血管上切小口，让血液自然流出，滴入已放有抗凝剂的盛器中。采血完毕，用干棉球压住出血口，以待止血......”。

3、“.....可用木夹夹住耳壳分钟。对象犬在前肢静脉后肢小隐静脉采血小型猪为耳大静脉后肢静脉特点采血量较大，继续保存动物生命。静脉采血三实验动物编号与分组编号单色涂染法在每组动物不超过只或个实验不超过只的情况下适用。实验动物大鼠小鼠。常用染色剂苦味酸溶液，可染成黄色。方法步骤涂染原则从左到右从上到下。左前肢为号左侧腹部号左后肢号。两耳后部号背中部号后肢背部号。右前肢号右侧腹部号右后肢号。尾巴根为号。额部为号双色涂染法在每组动物不超过只的情况下用。实验动物大鼠小鼠。常用染色剂苦味酸溶液，可染成黄色。作为“个”位数。中性红或品红溶液，可染成红色。作为“十”位数。方法步骤用两种颜色同时进行染色标记。用苦味酸黄色各个实验对象的分组编号。见表随机区组分组随机区组分组是按照定条件，将几个条件相同的试验对象分为个区组，然后在每个区组内部按随机化原则，将每个对象分配到各组。例将大鼠只，体重,按体重大小配成个单位组......”。

4、“.....试给出随机化分组的结果在单元格中分别键入编号区组号随机号，随后在中分别键入，然后拖动鼠标利用的自动填充功能完成的编号。在单元格键入后回车产生个随机数字，然后同样利用其自动填充功能在生成列随机数。需注意的是这里产生的随机数是会随着单元格的操作而变化的。故需选中至单元格区域,复制所选中的区域,并以数据格式进行选择性粘贴。选中列,单击菜单栏“数据”“排序”,在弹出的“排序”对话框中,选择以“区组”为“主要关键字”排序“,随机数”为“次要关键字”排序,然后,单击“确定”按钮,即完成以区组单位的随机数字排序分别在和单元格中,依次键入用鼠标同时选中列,单击菜单栏“数据”“排序”命令,在弹出的“排序”对话框中,选择以“编号”为排序的“主要关键字”,这样就可以得到各个实验对象的分组编号。在中键入“分组号”,在和中分别依次键入和,对余下的各个区组,同样依次输入和,作为同区组内对象的分组号。单击菜单栏“数据”“排序”......”。

5、“.....选择“编号”为排序的“主要关键字”,单击“确定”按钮,这样就可以得到各个实验对象的分组编号。见表分层分组法将动物先按雌雄分层，然后分别称体重，将体重相同的放在起，不同体重的动物放在不同的动物盒中，按实验设计要求分别放在各组动物盒中，使每只动物都有相同的机会分配到各组，如此分组的结果，各实验组动物平均体重基本致。抽签法如有小鼠只，要随机分为四组，可将小鼠从编号，将准备的号签也编号，然后将号签充分混合后，随机各抽个号，然后对号将小鼠分配到各个组去摸球法如实验所需设四组，即可用只雌雄各半的小鼠，将小鼠按体重大小排列，雄性鼠编为号，雌性鼠编为号，然后用红黄蓝绿四种彩球表示甲乙丙丁四组，将数量相等四种颜色的球放入个口袋里，充分混合后，每次摸取都要彻底混合，每次摸出个，然后放回袋中，若第次摸出是红球，就将第鼠放入甲组，第二次摸出的绿球，就将第二号放入丁组，第三次摸出的又是红球，因已出现过红球，可不计再放回口袋，重新摸取......”。

6、“.....将第三号鼠放入丙组，第四号鼠不必再摸球决定，剩下的乙组就是第四号鼠，如此类推，将鼠分配完毕。四实验动物的麻醉动物麻醉是消除动物手术疼痛，便于实验操作，保证动物安全，为手术创造良好的条件。动物全身麻醉分四期第期随意兴奋期，出现运动与运动失调第二期不随意兴奋期，由意识完全丧失至规则的自动呼吸开始时止。第三期外科麻醉期，第四期延髓麻醉期，进入此期，麻醉已严重过量。麻醉方法与麻醉药麻醉方法全身麻醉和局部麻醉，通过吸入注射静脉皮下肌肉腹腔口服灌胃等方法使动物麻醉。常用麻醉药物乙醚吸入，戊巴比妥钠硫贲妥钠氯胺酮静脉，普鲁卡因利多卡因局麻常用麻醉药的剂量及注射途径种类戊巴比妥硫贲妥钠盐酸氯胺酮水合氯醛乌拉坦途径途径途径途径小鼠大鼠豚鼠家兔狗猪麻醉注意事项麻醉前应准确称体重注意麻醉剂量，麻醉剂量与动物品种健康状况有关麻醉过程中注意观察动物的反应情况注意保温，在寒冷冬季，麻醉剂在注射前应加热至动物体温水平静脉注射时......”。

7、“.....不宜太快。注射速度过快是引起动物死亡的重要因素之如麻醉深度不够，必须经过定时间后，才能补充麻醉剂，如戊巴比妥钠至少须在第次注射分钟以后，苯巴比妥钠至少须经过分钟以上。般情况下，补加剂量次不得超过原注射量的。动物实验操作基本方法实验动物的捉持与给药实验动物的编号和分组实验动物的麻醉实验动物的采血大鼠豚鼠家兔犬捉持与给药小鼠•小鼠的捉持用右手拇指和食指捏住小鼠尾巴中部将小鼠提起，放在饲养合的面罩上。用左手拇指和食指迅速准确地捏住小鼠的两耳后及颈背部的皮肤，将小鼠提起。翻转左手掌，以左手掌心和中指夹小鼠背部的皮肤，使小鼠整个呈条直线。用左手拇指和食指迅速准确地捏住小鼠的两耳后及颈背部的皮肤，将小鼠提起。•大鼠的捉持首先戴好防护手套用右手拇指和食指抓住大鼠尾巴中部将大鼠提起，放在大鼠饲养盒的面罩上。左手顺势按卡在大鼠躯干背部，稍加压力向头颈部滑行。以左手拇指和食指捏住大鼠两耳后部的头颈皮肤......”。

8、“.....完成抓取固定。•豚鼠的捉持先用左手轻轻扣按住豚鼠背部。顺势抓紧其肩胛上方皮肤，拇指和食指环箍其颈部。用右手轻轻托住其臀部，即可将豚鼠抓取固定。•兔的捉持用右手抓住兔颈部的被毛和皮肤，轻轻把兔提起。用左手托住兔的臀部家兔的固定方式有腹卧式和仰卧式两种•犬的捉持实验者先抚摩，逐步接近，勿使其惊恐或将其激怒。用粗棉绳兜住狗的下颌，并在上颌打结勿太紧。如犬不合作，则先用根特制长柄狗头夹，从后面夹住犬颈，限制犬头部活动，再按上述方法捆住犬嘴。实验动物的捉拿•灌胃给药大小鼠将灌胃针连接在注射器上，吸入定量的药液。左手捉持动物，使头部向上。右手持针，把灌胃针头的前端放进动物的口腔，顺着上腭部插入咽部，顺咽后壁轻轻往下推。用右手食指将针栓慢慢往下压，将注射器中的药液灌入动物的胃中。剂量小鼠约体重。最大体积为只大鼠约体重，最大体积为只•灌胃给药兔将兔放进固定架内，灌胃者用左手拇指和中指挤压兔两颊，将下颌挤开使兔被动张口......”。

9、“.....胃管经开口器的孔插入，向前推进约，可达胃内。在插管时应将胃管另端泡在水中确认没有冒气泡，即可用注射器经胃管注入药液。豚鼠灌胃同家兔•皮下注射给药大小鼠颈背部腋下腹侧和后肢的皮下注射针头取锐角角度刺入皮下。将针头轻轻向左右摆动，易摆动则表示已刺入皮下。再轻轻抽吸，如无回血，可缓慢地将药物注入皮下•静脉注射给药大小鼠将大小鼠放在金属笼或小鼠固定器中，通过金属笼或大小鼠固定器的孔拉出鼠尾巴用左手捏住鼠尾巴中下部，用酒精棉球反复擦拭尾部注射时，以左手拇指和中指捏住鼠尾两侧，用食指从下面托起尾，右手持号针头的注射器，使针头与静脉平行小于度角大鼠亦可用舌下静脉注射•静脉注射给药犬前肢皮下头静脉或后肢小隐静脉注射。先将注射部位毛剪去。在静脉血管的近心端，用乳胶管扎紧肢体，使血管充盈，注射器针头向静脉血管的近心端方向穿刺。回抽注射器针栓，如有回血，则证明针尖在血管内，即可推注药液......”。